<html>
  <head>
    <meta content="text/html; charset=ISO-8859-1"
      http-equiv="Content-Type">
  </head>
  <body text="#000000" bgcolor="#FFFFFF">
    <div class="moz-cite-prefix">Dear Rebecca,<br>
      <br>
      completely agree with Charlie. As long as you don't have any
      climate control issues in your collection that could trigger mould
      issues, I would leave the dry specimens in the jar as they are.
      Especially in old historic specimens it is not always clear which
      type of preservation fluids were used for initial
      preparation/fixation. There is a whole variety of historic
      fixatives, some of them include heavy metal salts such as mercury
      in rather high concentrations (these were often used e.g. for
      preparations of marine invertebrates). If you don't know the
      history of preservation/fixation methods in your collection, I
      would be very careful in handling these specimens. Have in mind
      that prevailed usage of formaldehyde fixation/preservation starts
      roughly around 1910. Dried ethanol specimens may look rather poor
      (not initial fixation, only ethanol preservation = +/- dehydration
      of specimens to a certain extent). Be careful if your specimens
      have been prepared prior to 1900 and still look +/- good or show
      some salty incrustations on the specimens, which could be an
      indicator for historic fixatives other then formaldehyde.<br>
      <br>
      Rehydration will not restore the their original shape of
      specimens. If rehydration is necessary, I would also recommend
      method Simon Moore suggested in a previous NHCOLL-L posting (see
      below). For specific questions it might be worth contacting Simon
      directly.&nbsp; <br>
      <br>
      <br>
      All the best<br>
      Dirk<br>
      <br>
      *************<br>
      <font id="role_document" face="Arial" size="2" color="#000000"><font
          family="SANSSERIF" ptsize="10" face="Arial" lang="0" size="2">From:
          Simon Morre, <a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:couteaufin@btinternet.com">couteaufin@btinternet.com</a></font></font><br>
      <font id="role_document" face="Arial" size="2" color="#000000"><font
          family="SANSSERIF" ptsize="10" face="Arial" lang="0" size="2">Sent:
          21/08/2011 12:00:02 GMT Daylight Time<br>
          Subj: Re: [NHCOLL-L:5600] FW: Rehydration of a sea anemone</font></font><br>
      <br>
      <font family="SANSSERIF" ptsize="10" face="Arial" lang="0"
        size="2"><font style="BACKGROUND-COLOR: transparent"
          face="Arial" size="2" color="#000000"><font face="Arial"
            size="2" color="#000000">
            <div>Always rather ticklish when you have the holotype to
              perform such a radical treatment!</div>
            <div>Bear in mind also that rehydration will improve the
              appearance and texture but it will compromise future DNA
              extraction/readings.&nbsp; If you need further advice on this
              let me know.</div>
            <div>I have also forwarded this to John Simmons who may also
              have some comments.</div>
            <div>&nbsp;</div>
            <div>I tend to use Decon-90 at around 3 to 5% in deionised
              water as a rehydrating agent.</div>
            <div>The reaction is catalysed by warming it to no more than
              50 deg. Centigrade (hotplate) and make sure that the
              container has a loose lid to prevent massive evaporation
              during warming.</div>
            <div>Obviously photograph and weigh the specimen prior to
              treatment.</div>
            <div>Start the process first thing as it can take some time
              and so that you can monitor its progress during the day.&nbsp;
            </div>
            <div>The fluid will start to yellow a bit and may smell
              rather fishy; the specimen will gradually sink into the
              fluid - this will only happen in an ideal situation, so if
              the specimen has expanded and feels soft and more flexible
              like it should if not dry, then it will have reached its
              'end-point'.&nbsp; If it's still floating then it will have air
              trapped inside.</div>
            <div>&nbsp;</div>
            <div>In which case.... place the specimen in clean water and
              place the container inside a vacuum desiccator.&nbsp; Apply a
              mild vacuum to it and air should bubble out of the
              specimen.&nbsp; After no more than a minute, stop the pump
              (making sure that the hose is removed from the desiccator
              and that the tap is closed <strong>before</strong> the
              pump is switched off - or it will suck the oil from the
              pump all over the specimen!!)</div>
            <div>Then release the vacuum slowly and the anemone should
              sink completely or partly.&nbsp; Repeat the process until no
              more air bubbles out.&nbsp; Small amounts of trapped air will
              often slowly diffuse out later in the alcohol preservative
              (see below).</div>
            <div>You should now have a fully rehydrated specimen.&nbsp; Place
              into formalin to refix overnight and next day start to
              transfer into an alcohol dehydration ladder so that by the
              end of the day, the specimen is preserved in IMS once
              again.&nbsp; Ensure that the jar seal is good!&nbsp; Finally, make a
              note of the treament for the specimen's record and reweigh
              the specimen, having drained off excess fluid and
              re-photo.</div>
            <div>&nbsp;</div>
            <div>That should hopefully be it!</div>
            <div>&nbsp;</div>
            <div><font family="SANSSERIF" ptsize="10" face="Arial"
                lang="0" size="2">With all good wishes, Simon<br>
                <br>
                Simon Moore MIScT, FLS, ACR,<br>
                Conservator of Natural Sciences,</font></div>
          </font></font></font><br>
      <br>
      <br>
      Am 04.01.2013 05:34, schrieb <a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:CSTURMJR@pitt.edu">CSTURMJR@pitt.edu</a>:<br>
    </div>
    <blockquote
      cite="mid:f3022b57df9f0ee79fe701819371fd6a.squirrel@webmail.pitt.edu"
      type="cite">
      <pre wrap="">Rebecca,

I will not opine on how to test what solution may have been used to store
the specimens, however, I will question why you might want to rehydrate
them. Unless there is a specific need to rehydrate a specimen, I would
advocate to leave them in a dessicated state. The specimen is already
dessicated and as such will probably stay that way for a long time (unless
something is done to it). Rehydration methods can adversely affect a
specimen. Better methods may be available in the future. Unless there is a
need to rehydrate the specimen for a current study, store it dry. I have
attached a chapter that I wrote six years ago and there are some
references in Section 5.9 that you might like to read before rehydrating.


</pre>
      <blockquote type="cite">
        <pre wrap="">Hello all,

We have several old collections in the park without any information about
how they were prepared.  Many need to be rehydrated and rehoused into
better storage.  Is there a simple test to determine what they are/were
preserved in before we rehydrate?

thank you

--

Rebecca Cole-Will, Cultural Resources Program Manager  ~  Acadia National
Park, 20 McFarland Hill Drive, PO Box 177, Bar Harbor, ME  04609
 ~207.288.8728 ph., 207.288.8709 fx.
_______________________________________________
Nhcoll-l mailing list
<a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:Nhcoll-l@mailman.yale.edu">Nhcoll-l@mailman.yale.edu</a>
<a class="moz-txt-link-freetext" href="http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l">http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l</a>

</pre>
      </blockquote>
      <pre wrap="">

Regards,
Charlie
.................................................
Charlie Sturm

Treasurer
American Malacological Society

Research Associate - Section of Mollusks
Carnegie Museum of Natural History
Pittsburgh, PA, USA

Associate Professor - Family Medicine
Fellow-American Academy of Family Practice
Fellow-Academy of Wilderness Medicine</pre>
      <br>
      <fieldset class="mimeAttachmentHeader"></fieldset>
      <br>
      <pre wrap="">_______________________________________________
Nhcoll-l mailing list
<a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:Nhcoll-l@mailman.yale.edu">Nhcoll-l@mailman.yale.edu</a>
<a class="moz-txt-link-freetext" href="http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l">http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l</a>
</pre>
    </blockquote>
    <br>
    <br>
    <pre class="moz-signature" cols="72">-- 
Dirk Neumann

Tel: 089 / 8107-111
Fax: 089 / 8107-300
email: Dirk.Neumann(a)zsm.mwn.de

Postanschrift:

Staatliche Naturwissenschaftliche Sammlungen Bayerns
Zoologische Staatssammlung M&uuml;nchen
Dirk Neumann, Sektion Ichthyologie / DNA-Labor
M&uuml;nchhausenstr. 21
81247 M&uuml;nchen

Besuchen Sie unsere Sammlung:
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Dirk Neumann

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postal address:

Bavarian Natural History Collections
The Bavarian State Collection of Zoology
Dirk Neumann, Section Ichthyology / DNA-Lab
Muenchhausenstr. 21
81247 Munich (Germany)

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</pre>
  </body>
</html>