<html>
  <head>
    <meta content="text/html; charset=windows-1252"
      http-equiv="Content-Type">
  </head>
  <body bgcolor="#FFFFFF" text="#000000">
    <div class="moz-cite-prefix">Hi Al,<br>
      <br>
      you might see yourself confronted with the following problems:<br>
      <br>
      <u>fatty specimens:</u> if you have specimens that are very fatty
      or include a lot of oils (e.g. some larger cyprinids or sharks),
      you may have problems with fatty deposits that build up on the
      specimens and which might be hard to remove afterwards (e.g.
      cholesterol, but also thin oil films on sharks). This can leads to
      acidic and highly reactive surface layers which may damage
      specimens, especially fish with their thin bony structures such as
      scales or in the head skeleton. Similar depositions can be
      observed in insects if these are stored refrigerated (e.g. in
      tissue collections at 4+°C or below) because of fats released from
      fat bodies. It is worth to consider to check each single drum
      after removing it from the cold storage period and to consider
      time and workforce to remove such deposits from specimens
      thereafter.<br>
      <br>
      <u>reactions inside the holding fluid:</u> inside each jar, you
      have a complex chemical mixture (preservative, residual fixatives
      &amp; body fluids that leach from specimens, denaturing agents,
      etc.). When lowering the temperature, you shift the equilibrium
      and some of these may start to fall out (this is the
      paraformaldehyde needles or "coudiness" you already mentioned).
      This might not be that much of a problem in your drums (because of
      the given fluid : specimen ratio), but it might be worth to check
      if after the cooler storage it is necessary to exchange the
      holding fluid. At this point, when you discover "Yes, I need to
      exchange it", you change also the stable equilibrium of
      preservative(s) and specimens inside your drums. This means that
      you may trigger a couple of deteriorating processes again (e.g.
      oxidisation because of O2 influx, leaching of body fluids,
      decolourisation, etc.). For some specimens this might be less
      critical, for others more. In any case you should clean the
      respective drums if specimens ought to go back in the same
      containers.<br>
      <br>
      <u>reactions of the holding containers:</u> should be that
      critical with your plastic drums; in fact lower temperatures and
      thus shrinkage of the lids should increase tightness of the drums
      and decrease evaporation losses. However, I would avoid such
      experiments with glass containers, especially historic ones (such
      as old battery or ground stopper jars), as this could have
      potential to break the necks of such jars or the jar itself
      (because of the tension that builds up inside the glass melt on
      the one, and - for stopper jars - in the neck of the jars on the
      other). Might be worth to check the gaskets (shrinkage) after you
      have removed the drums from the cold storage again. Could happen
      that they do not expand to the original size again, so evaporation
      from these drums might increase (some sort of monitoring is surely
      advisable). <br>
      <br>
      <u>Condensation issues:</u> when bringing your specimens in the
      cooler storage, you may have issues with condensation of water
      inside the container (depending on how often the material /
      storage area is accessed from the outside during this time. It
      shouldn't be that much of an issue for specimens inside the drum,
      but maybe for any labels / inscriptions on the outside of your
      drums (if this is the case).<br>
      <br>
      Hope this gives you some guidance.<br>
      <br>
      Have a nice weekend &amp; all the best for the move of your fish
      collection!<br>
      Dirk<br>
      <br>
      <br>
      Am 04.11.2016 um 04:15 schrieb <a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:Alastair.Graham@csiro.au">Alastair.Graham@csiro.au</a>:<br>
    </div>
    <blockquote
      cite="mid:b757039168d44c9fa961ff21d792a388@exch3-mel.nexus.csiro.au"
      type="cite">
      <meta name="Generator" content="Microsoft Exchange Server">
      <!-- converted from rtf -->
      <style><!-- .EmailQuote { margin-left: 1pt; padding-left: 4pt; border-left: #800000 2px solid; } --></style>
      <font face="Arial" size="2"><span style="font-size:10pt;">
          <div>Hello all</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>Does anyone have any experience with storing preserved
            specimens at temperatures below 15°C (59°F) for an extended
            period?  Or, what is the lowest temperature that preserved
            specimens can be safely stored?</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>A portion of our fish collection needs to be re-located
            for 4-6 months (perhaps even longer) during building works. 
            Our specimens were originally fixed in 10% formalin and have
            been transferred to 70% ethanol for long-term storage.  The
            specimens are
            stored in 30 litre plastic drums (high density
            polyethylene), which have rubber gaskets.  I will be
            re-locating about 150 drums.  I had originally suggested
            hiring a hazardous materials shipping container with
            temperature control (15-22°C or 59-72°F).  However,
            such a container is proving difficult to source.  Now, a
            refrigerated shipping container has been suggested, although
            I do not know the temperature range it can be set at.</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>John Simmons in his <i>Fluid Preservation </i><i>–</i><i>
              A </i><i>Comprehensive Reference</i> (2014) states on
            page 122 that the preferred storage environment for fluid
            collections is 18-21°C (65-70°F)”.  Also on pages 103-104,
            John refers to a test where
            he placed jars of specimens in a refrigerator, demonstrating
            that the 70% ethanol turned cloudy below about 60°F (16°C). 
            “The cloudiness may have been caused by the formation of
            paraformaldehyde from the trace amounts of formaldehyde in
            the preservative, the
            congealing of lipids extracted by the alcohol, or other
            causes, but in any case, it was an unacceptable change in
            the preservative.”</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>It has also been suggested that storing the specimens
            below 15°C and then moving them for examination to a lab at
            room temperature (22°C) could be harmful to the specimens. 
            Additionally, the humidity of the shipping container may
            promote mould growth
            on the drums.</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>Perhaps I have (or actually John in his book has)
            answered my question about what is the lowest temperature
            that specimens can be safely stored.  However, I would be
            interested to hear your views on storing specimens for an
            extended period below 15°C.</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div>Cheers</div>
          <div> </div>
          <div>Al</div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div><font color="#0099CC" size="1"><span
                style="font-size:8pt;"><b>Alastair (Al) Graham<br>
                </b><font color="black">Fish Collection Manager<br>
                  Australian National Fish Collection </font></span></font></div>
          <div><font size="1"><span style="font-size:8pt;">National
                Research Collections Australia<br>
                CSIRO National Facilities and Collections</span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div><font size="1"><span style="font-size:8pt;">P: +61 3 6232
                5351<font face="Calibri" color="#BED600"><b> </b></font><font
                  color="#BED600"><b>| </b></font>M: +61 (0) 419 756
                411 <font color="#BED600"><b>|</b></font><font
                  face="Calibri"> </font>F: +61 3 6232
                5000</span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"><a moz-do-not-send="true" href="mailto:alastair.graham@csiro.au"><font
                    face="Arial" color="blue" size="1"><span
                      style="font-size:8pt;"><u>alastair.graham@csiro.au</u></span></font></a><font
                  size="1"><span style="font-size:8pt;"> </span></font><font
                  face="Arial" color="#BED600" size="1"><span
                    style="font-size:8pt;"><b>|</b></span></font><font
                  size="1"><span style="font-size:8pt;"> </span></font><a moz-do-not-send="true" href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=http-3A__www.csiro.au_&d=CwMFAw&c=-dg2m7zWuuDZ0MUcV7Sdqw&r=CLFZJ3fvGSmDp7xK1dNZfh6uGV_h-8NVlo3fXNoRNzI&m=1OfXHnIm39DdfivH4KP1iDyP9Ldasd0XevMmnNfu2pk&s=zeyqFgmWhK6NUEszmFMiIN7Gd4ilpiWrKPxew5R71sc&e="><font
                    face="Arial" color="blue" size="1"><span
                      style="font-size:8pt;"><u>www.csiro.au</u></span></font></a><font
                  color="blue" size="1"><span style="font-size:8pt;"> </span></font><font
                  face="Arial" color="blue" size="1"><span
                    style="font-size:8pt;">
                    <br>
                  </span></font><font face="Arial" size="1"><span
                    style="font-size:8pt;">Address: Castray Esplanade,
                    Hobart Tas 7000, Australia</span></font></span></font></div>
          <div><font size="1"><span style="font-size:8pt;">Post: GPO Box
                1538, Hobart Tas 7001, Australia</span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
          <div><font face="Calibri" size="2"><span
                style="font-size:11pt;"> </span></font></div>
        </span></font>
      <br>
      <fieldset class="mimeAttachmentHeader"></fieldset>
      <br>
      <pre wrap="">_______________________________________________
Nhcoll-l mailing list
<a class="moz-txt-link-abbreviated" href="mailto:Nhcoll-l@mailman.yale.edu">Nhcoll-l@mailman.yale.edu</a>
<a class="moz-txt-link-freetext" href="http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l">http://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l</a>

_______________________________________________ 
NHCOLL-L is brought to you by the Society for the Preservation of
Natural History Collections (SPNHC), an international society whose
mission is to improve the preservation, conservation and management of
natural history collections to ensure their continuing value to
society. See <a class="moz-txt-link-freetext" href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=http-3A__www.spnhc.org&d=CwMD-g&c=-dg2m7zWuuDZ0MUcV7Sdqw&r=CLFZJ3fvGSmDp7xK1dNZfh6uGV_h-8NVlo3fXNoRNzI&m=MfzVXASmx4oCKfQndq_BmTSpURMGgGaAyVK1R9tGPow&s=otdtapCS-OglEyEWk3YZ07Qpz9dhH7jtwzHZojV3di8&e=">http://www.spnhc.org</a> for membership information.
Advertising on NH-COLL-L is inappropriate.
</pre>
    </blockquote>
    <br>
    <p><br>
    </p>
    <pre class="moz-signature" cols="72">-- 
Dirk Neumann

Tel: 089 / 8107-111
Fax: 089 / 8107-300
email: Dirk.Neumann(a)zsm.mwn.de

Postanschrift:

Staatliche Naturwissenschaftliche Sammlungen Bayerns
Zoologische Staatssammlung München
Dirk Neumann, Sektion Ichthyologie / DNA-Labor
Münchhausenstr. 21
81247 München

Besuchen Sie unsere Sammlung:
<a class="moz-txt-link-freetext" href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=http-3A__www.zsm.mwn.de_ich_&d=CwMD-g&c=-dg2m7zWuuDZ0MUcV7Sdqw&r=CLFZJ3fvGSmDp7xK1dNZfh6uGV_h-8NVlo3fXNoRNzI&m=MfzVXASmx4oCKfQndq_BmTSpURMGgGaAyVK1R9tGPow&s=J0hRFEI-sML9WVmfb14g-3Egd1rkqNG_jmNhs7wlveo&e=">http://www.zsm.mwn.de/ich/</a>

---------

Dirk Neumann

Tel: +49-89-8107-111
Fax: +49-89-8107-300
email: Dirk.Neumann(a)zsm.mwn.de

postal address:

Bavarian Natural History Collections
The Bavarian State Collection of Zoology
Dirk Neumann, Section Ichthyology / DNA-Lab
Muenchhausenstr. 21
81247 Munich (Germany)

Visit our section at:
<a class="moz-txt-link-freetext" href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=http-3A__www.zsm.mwn.de_ich_&d=CwMD-g&c=-dg2m7zWuuDZ0MUcV7Sdqw&r=CLFZJ3fvGSmDp7xK1dNZfh6uGV_h-8NVlo3fXNoRNzI&m=MfzVXASmx4oCKfQndq_BmTSpURMGgGaAyVK1R9tGPow&s=J0hRFEI-sML9WVmfb14g-3Egd1rkqNG_jmNhs7wlveo&e=">http://www.zsm.mwn.de/ich/</a>



</pre>
  </body>
</html>