<div dir="ltr"><div class="gmail_default" style="font-family:tahoma,sans-serif;font-size:small;color:#000000">I suspected it might be a DPR. The longer the specimen has been dead, the more difficult it is to fix, both due to the slower penetration of the fixative and the breakdown of the tissue matrix, which begins with cell death. When collecting DOR specimens, it is best to fix them as quickly as possible. If the specimens have to be frozen (which causes osmotic damage to the cells, as Dirk mentioned) I recommend thawing them in a 10% buffered formalin solution and injecting them as they thaw (but if you want tissues, remove those before the specimen is in contact with formaldehyde). You may not ever be able to get this specimen to harden up as much as a fresh specimen would due to previous tissues breakdown (it depends largely on how long the interval was between death and fixation, and the temperature it was exposed to).<br></div><div class="gmail_default" style="font-family:tahoma,sans-serif;font-size:small;color:#000000"><br clear="all"></div><div><div dir="ltr" class="gmail_signature" data-smartmail="gmail_signature"><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><div><div dir="ltr"><font size="2"><span style="font-family:tahoma,sans-serif">John E. Simmons<br>Writer and Museum Consultant</span></font></div><div dir="ltr"><font size="2"><span style="font-family:tahoma,sans-serif">Museologica<br><i>and</i><br>Associate Curator of Collections<br>Earth and Mineral Science Museum & Art Gallery<br>Penn State University<br><i>and</i><br>Investigador Asociado, Departamento de Ornitologia<br>Museo de Historia Natural, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima</span></font><br></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div></div><br></div><br><div class="gmail_quote"><div dir="ltr" class="gmail_attr">On Thu, Jun 22, 2023 at 11:28 AM Marshall Boyd <<a href="mailto:marshallboyd1989@gmail.com">marshallboyd1989@gmail.com</a>> wrote:<br></div><blockquote class="gmail_quote" style="margin:0px 0px 0px 0.8ex;border-left:1px solid rgb(204,204,204);padding-left:1ex">Thanks everyone. The snake is a Black Racer snake, about 3-4 feet long. We injected using 10% buffered Formalin following John Simmons guide (love your book by the way) and after injection partially submerged but with formalin soaked paper towels for 4 days (over the weekend). The specimen still seems much more malleable and floppy than previous specimens. It was a DOR with several sections rather crunched from a car but was tissued and fixed June 8 (within 2 days of discovery) and moved to 20% EtOH June 13 but was not moved to 40% EtOH upon discovery it wasn’t fixed as much as we were hoping June 16.
_______________________________________________<br>
Nhcoll-l mailing list<br>
<a href="mailto:Nhcoll-l@mailman.yale.edu" target="_blank">Nhcoll-l@mailman.yale.edu</a><br>
<a href="https://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l" rel="noreferrer" target="_blank">https://mailman.yale.edu/mailman/listinfo/nhcoll-l</a><br>
<br>
_______________________________________________<br>
NHCOLL-L is brought to you by the Society for the Preservation of<br>
Natural History Collections (SPNHC), an international society whose<br>
mission is to improve the preservation, conservation and management of<br>
natural history collections to ensure their continuing value to<br>
society. See <a href="http://www.spnhc.org" rel="noreferrer" target="_blank">http://www.spnhc.org</a> for membership information.<br>
Advertising on NH-COLL-L is inappropriate.<br>
</blockquote></div>